Formation réglementaire « Initiation à chirurgie expérimentale » : travaux pratiques sur rats pour l’apprentissage des bonnes pratiques chirurgicales avec réalisation d’ovariectomies sans réveil

Les principes de remplacement ont été appliqués dans les TD et TP réalisés sur des tissus non vivants. Les TD sur les sutures se feront sur des supports en silicone qui simulent la peau. Les TD et TP sur la préparation de l’animal et l’asepsie se feront avec des peluches et des champs opératoires pour simuler le poste opératoire. Un TD sur un modèle de rat en silicone PVC-rat permettra l’apprentissage des ligatures, de l’hémostase et de la technique globale du prélèvement d’organe. Un TP sera réalisé sur cadavres de rats pour l’apprentissage des techniques sur tissus animaux, ainsi que pour mettre en pratique la partie exploration interne, anatomie, manipulation des organes et tissus animaux avec instruments de chirurgie. Pour assurer une formation complète, nous avons tout de même choisi de ne pas remplacer l’animal vivant lors du dernier TP, mais de ne pas procéder à leur réveil après l’intervention.

Le principe de réduction est appliqué en réduisant considérablement le nombre d’animaux à 1 par stagiaire. Les formations chirurgie seront réalisées avec un faible nombre de participants, limitant à 4 le nombre de stagiaire. Une démonstration sera faite par l’encadrant avant la séance, ce qui ramène à 5 le nombre d’animaux utilisés par session. Nous ne dépasserons pas le nombre de 2 sessions par an, soit un total de 50 rattes femelles utilisées tous les 5 ans. Dans un objectif de réduction, nous utiliserons tant que possible des femelles rats de réforme ou surnuméraires.

Nous proposons dans notre DAP plusieurs raffinements. – Organisation du déroulement : la démonstration de l’encadrant est réalisée sans présence d’autres animaux vivants dans la salle d’expérimentation, afin d’éviter le stress lié aux odeurs et aux vocalisations. – Habituation et réduction du stress : chaque animal bénéficiera d’un temps minimal de 10 minutes avec le stagiaire avant l’induction, afin de limiter le stress lié à la manipulation et à la contention. – Rythme adapté : la planification des gestes est réalisée pour limiter le temps d’attente et éviter le mélange des animaux non encore anesthésiés. – Examen clinique préalable : chaque ratte est examinée et pesée afin de s’assurer de son bon état général et d’exclure tout individu présentant un signe de fragilité (poil ébouriffé, prostration, pli cutané persistant). – Analgésie préventive : administration de buprénorphine (0,05 mg/kg SC) au moment de l’induction, pour assurer un effet analgésique avant toute incision. – Prévention des effets secondaires de l’anesthésie : surveillance attentive des signes de dépression respiratoire, hypoxie ou bradycardie ; ajustement des concentrations d’isoflurane ou administration complémentaire de kétamine si nécessaire. – Prévention de la déshydratation et de l’hypovolémie : injections sous-cutanées de NaCl 0,9 % adaptées au poids de l’animal, en particulier en cas de saignement. – Prévention de l’hypothermie : utilisation de plateaux chauffants adaptés et limitation de la durée d’exposition de la cavité abdominale. – Protection oculaire : application de gel ophtalmique pour éviter le dessèchement cornéen. – Asepsie rigoureuse : tonte large, aspiration des poils, triple désinfection (bétadine/alcool), matériel, instruments et fils de suture stériles. – Réduction des traumatismes : apprentissage des gestes doux de dissection, ligature et manipulation des organes, avec correction immédiate par l’encadrant. – Pas de réveil des animaux : tous les animaux sont euthanasiés en fin de procédure par injection IV de Euthasol Vet, conformément aux bonnes pratiques, évitant toute douleur post-opératoire. – Vérification de la mort : contrôle systématique de l’arrêt cardiaque et respiratoire avant toute manipulation ultérieure.